�������| Gene ��������Transfer
������������Transfection
Roc
���
he
���
Applied Science
���������������
9115 Hague Road,
���������������������������������������
Indianapolis,
�������������������
IN 46250
Sales:
���
800-262-1640
��������������������
Tec
����
hnical:
������������
800-262-4911
������
bioc
���
hemts.us@roc
����������������������
he.com
�����������������
www.roche-applied-science.com/transfection
�������������������������������������
Simple Optimization Protocol for Diffi
���������
cult to
����������������������������
Transfect Cells Using FuGENE
�
�
®
���
HD
��������������������
Transfection Reagent
�����������������������������������
Some cell lines are considered
���������������������������
diffi cult to transfect because the
�������������������������������
3. Return the cell plates
�������������������������
to the incubator and lea
���
ve
�
the transfection
����������������������������������������������
correct parameters for transfection of tha
����������������
t cell line are not known.
������������
complex pla
�����������������������������������
te at room temperature.
����
�������
The
���
rea
��������
gent:DNA
�����������
ratio must
���������������������������
be tested because laboratories may
���������������������������������������������������������
����������������������������������������������������������
quantify DNA amounts slightly differently. The amount
��
of complex
�������������������������
4. Wait 15 minutes,
����
then
��������������
repeat the complex
�����
addition, this time in
�����������������������������������������������������������
added is an equally critical factor; too much complex may result the wells on the right side of each cell plate.
��������������������������������
in cytotoxicity, and too little
�����������
complex
�����������������
may result in suboptimal
������������������������������������������������������������
��������������������������������������������
expression. When testing new cell lines,
��������������
we use a simple protocol
����������������������������������������������������
5. Return the cell plates to the incubator until
���
time of assay (24-72
���������������
which provides comparisons between four critical parameters:
�����������������������������������������
hours depending upon gene expressed).
���������������������������������������������
• Ratio of µl of reagent to µg of DNA
����������������������������������������������������������������
• ������������������
• Amount of complex added to the cells
����������������� ��������������������������������������������
6. Prior to assaying the cells for expression of the transfected
• ������������������������������������
• Length of time for complex to form gene, visually inspect the cells. Figure 1 shows the data from an
• ����������������������������������
• Cell density
�����������������������������������������������������������������
experiment in which only two amounts of complex
�
were added
• ������������ ���������������������������������
to the plates; the protocol
�������������
is easily
���������
modifi ed
�����������
to suit individual
Day 1
��������������������������������������������������������������
needs.
�����
1. Plate the cells in two 96-well plates at two different densities,
�������
��������������������������������������������������������������
using antibiotic-free complete medium. These are the cell plates.
����������������������������������������������������������������������
��������������������������������������
Day 2
����������������������������
1. Prepare the transfection complex in serum-free medium:
���������������������������������������������������
�
������
��
��
�����
a. Calculate volume needed. Prepare diluted plasmid at 20 µg/
�����������������������������������������������������������������������
�������������
ml.
�����������������������������������������������
�������������
b. Form complexes in an empty 96-well round bottom plate;
�������
�����������������������������������������������������������
this plate is the transfection complex plate. Complexes are �������
����������
formed on this pla
�����������������
te; 2 wells contain controls:
���������������������������������������
�������
�������������������������������������������������������
• The reagent control (top) well contains 150 µl
���������
serum-free
�������
�������������
medium and 12 µl FuGENE
®
��������������������������
HD
�����������������������
Transfection Reagent. ��������������������
• The plasmid control (bottom) well contains 150 µl diluted
�������
����������������������������������������
� � � � � � � � � � � � � � � � � � � � � � � �
�� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� �� ��
plasmid.
�������
• ��������������������
• The six comple
�������������������������������������
x wells (middle) each contain 3 µg of diluted
���������������� ���������������� ����������������� �����������������
plasmid in 150 µl medium and 12, 10.5, 9, 7.5, 6, and 4.5
���������� ���������������� ���������� ��� �������������
������������������������
�
�������������������������
•
µl FuGENE
®
HD Transfection Reagent, respectively. This
�����������������������������������������������������������
����������������������������������������������������������
��������
produces six different ratios of reagent to DNA.
• ������������������������������������������������������������
��������������������������������
2. As soon as the last complex
������
has
��������
been
���������������
formed, remove the
������
cell
�
����
pla
�
tes
���������������
from the incuba
�����
tor
�������������
. Gently add
����������������
different amounts of
����������������
complex
�����������
to the wells
������������
on the left side of each cell plate, such
that fi ve different complex amounts are added to each of the six
������������������������������������������������
complex ratios, and each row on the pla
������������
te corresponds to one of
���������������������������
the six different complex
�������������������������������������
ratios from the complex plate. The same
������������������������������������������������������
plate layout is used for both cell plates.
���������
������������������������������������������������������������
�����������������������������������������������������������������
�������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������������
Protocol Guide ı 2008 View entire protocol online at
www.biotechniques.com/protocol ı BioTechniques ı 33
ProtocolGuide06-07.indd 27 10/10/06 4:10:14 PM
Roche protocol.indd 33 10/26/07 11:23:20 AM
Page 1 |
Page 2 |
Page 3 |
Page 4 |
Page 5 |
Page 6 |
Page 7 |
Page 8 |
Page 9 |
Page 10 |
Page 11 |
Page 12 |
Page 13 |
Page 14 |
Page 15 |
Page 16 |
Page 17 |
Page 18 |
Page 19 |
Page 20 |
Page 21 |
Page 22 |
Page 23 |
Page 24 |
Page 25 |
Page 26 |
Page 27 |
Page 28 |
Page 29 |
Page 30 |
Page 31 |
Page 32 |
Page 33 |
Page 34 |
Page 35 |
Page 36 |
Page 37 |
Page 38 |
Page 39 |
Page 40 |
Page 41 |
Page 42 |
Page 43 |
Page 44 |
Page 45 |
Page 46 |
Page 47 |
Page 48 |
Page 49 |
Page 50 |
Page 51 |
Page 52 |
Page 53 |
Page 54 |
Page 55 |
Page 56 |
Page 57 |
Page 58 |
Page 59 |
Page 60 |
Page 61 |
Page 62 |
Page 63 |
Page 64 |
Page 65 |
Page 66 |
Page 67 |
Page 68 |
Page 69 |
Page 70 |
Page 71 |
Page 72 |
Page 73 |
Page 74 |
Page 75 |
Page 76